Kết quả lâm sàng của chu kỳ IVF sử dụng mẫu mTESE trữ lạnh: Báo cáo loạt ca
PDF

Ngôn ngữ sử dụng

Cách trích dẫn

Nguyễn, T. M., Nguyễn, T. L. H., Vũ, T. M. A., Lê, M. A., & Giáp, T. M. P. (2024). Kết quả lâm sàng của chu kỳ IVF sử dụng mẫu mTESE trữ lạnh: Báo cáo loạt ca. Tạp Chí Phụ sản, 22(3), 78-82. https://doi.org/10.46755/vjog.2024.3.1710

Tóm tắt

Hiện nay, thu nhận tinh trùng bằng vi phẫu tinh hoàn (Microdissection Testicular Sperm Extraction – mTESE) là phương pháp thu nhận tinh trùng hiệu quả, an toàn nhất ở nam giới vô tinh không do tắc (NOA). mTESE là kỹ thuật can thiệp tối thiểu, ít gây tổn thương và biến chứng hơn phương pháp TESE. Tuy nhiên, tiến hành mTESE nhiều lần làm tăng nguy cơ tổn thương không hồi phục, tổn thương mạch rộng, gây teo tinh hoàn hoặc suy sinh dục thứ phát. Do đó, trữ lạnh tinh trùng thu nhận từ mTESE giúp người bệnh giảm số lần phẫu thuật, giảm chi phí điều trị, chủ động trong điều trị thụ tinh trong ống nghiệm. Mẫu tinh trùng thu nhận từ mTESE thường có số lượng ít, di động kém, nên thất thoát tinh trùng sau quá trình đông-rã dẫn đến người bệnh phải tiến hành mTESE lại hoặc đông noãn hoặc xin tinh trùng. Vì vậy, đông lạnh mẫu tinh trùng mTESE là một thách thức lớn đối với các chuyên viên phôi học. Tại Bệnh viện Đa khoa Tâm Anh Hà Nội chúng tôi đã tối ưu hoá quy trình xử lý và đông lạnh mẫu tinh trùng mTESE. Từ tháng 03 năm 2022 đến tháng 12 năm 2023 chúng tôi đã thực hiện 64 ca mTESE, trong đó 29 ca tìm thấy tinh trùng (45,3%), 12/29 ca có tinh trùng đã được đông lạnh bằng phương pháp đông tinh ít. Chúng tôi đã tiến hành rã đông 7/12 ca, kết quả 100% các ca có đủ tinh trùng cho ICSI, 9 chu kỳ chuyển phôi trữ được thực hiện với 2 trẻ ra đời khỏe mạnh từ mẫu mTESE rã đông.

Từ khóa

mTESE, Đông tinh ít, Trẻ sinh sống
PDF

Tài liệu tham khảo

[1] Tharakan T, Luo R, Jayasena CN, Minhas S. Non-obstructive azoospermia: current and future perspectives. Fac Rev 2021;10:7. https://doi.org/10.12703/r/10-7.
[2] Gangrade BK. Cryopreservation of testicular and epididymal sperm: techniques and clinical outcomes of assisted conception. Clin Sao Paulo Braz 2013;68 Suppl 1:131–40. https://doi.org/10.6061/clinics/2013(sup01)15.
[3] Isachenko V, Isachenko E, Katkov II, Montag M, Dessole S, Nawroth F, et al. Cryoprotectant-free cryopreservation of human spermatozoa by vitrification and freezing in vapor: effect on motility, DNA integrity, and fertilization ability. Biol Reprod 2004;71:1167–73. https://doi.org/10.1095/biolreprod.104.028811.
[4] Schulz M, Risopatrón J, Uribe P, Isachenko E, Isachenko V, Sánchez R. Human sperm vitrification: A scientific report. Andrology 2020;8:1642–50. https://doi.org/10.1111/andr.12847.
[5] Manning M, Jünemann KP, Alken P. Decrease in testosterone blood concentrations after testicular sperm extraction for intracytoplasmic sperm injection in azoospermic men. Lancet Lond Engl 1998;352:37. https://doi.org/10.1016/s0140-6736(05)79518-0.
[6] Cohen J, Garrisi GJ, Congedo-Ferrara TA, Kieck KA, Schimmel TW, Scott RT. Cryopreservation of single human spermatozoa. Hum Reprod Oxf Engl 1997;12:994–1001. https://doi.org/10.1093/humrep/12.5.994.
[7] Liu S, Li F. Cryopreservation of single-sperm: where are we today? Reprod Biol Endocrinol RBE 2020;18:41. https://doi.org/10.1186/s12958-020-00607-x.
[8] Tao Y, Sanger E, Saewu A, Leveille M-C. Human sperm vitrification: the state of the art. Reprod Biol Endocrinol 2020;18:17. https://doi.org/10.1186/s12958-020-00580-5.
Creative Commons License

Công trình này được cấp phép theo Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License. .

Download

Dữ liệu downlad không hiện hữu.